PATHOLOGY IMMUNOLOGY AND MOLECULAR BIOLOGY TECNIQUES Canale unico
Docente coordinatore e verbalizzante: ISOTTA CHIMENTI
Modulo 1: ADVANCED MOLECULAR BIOLOGY TECNIQUES
- Tipologia
- Discipline Mediche
- SSD
- MED/46
- Anno
- 3º anno
- Semestre
- 1º semestre
- CFU
- 6
- Distribuzione delle ore
- 32 classroom hours, 40 laboratory hours
- Docenti
- VITTORIO PICCHIO
ISOTTA CHIMENTI
Francesca PAGANO
Modulo 2: GENERAL PATHOLOGY AND IMMUNOLOGY
- Tipologia
- Discipline Mediche
- SSD
- MED/04
- Anno
- 3º anno
- Semestre
- 1º semestre
- CFU
- 6
- Distribuzione delle ore
- 48 classroom hours
- Docenti
- DONATELLA PONTI
PAOLO ROSA
Risultati di apprendimento attesi
Lo studente apprenderà i principi generali ed i meccanismi base della patologia e della fisiopatologia con particolare riferimento alla immunologia. Il taglio del modulo sarà poi indirizzato verso le tecniche avanzate di biologia molecolare anche con riferimento alla diagnostica e alla ricerca di base e soprattutto alla integrazione con i modelli cellulari avanzati. Nel modulo si includerà a sviluppare dimestichezza con la pubblicazione scientifica e la lettura critica di manoscritti su giornali di alto impatto.
Prerequisiti
Indispensabile: Biologia cellulare e biologia molecolare
Importante: Biochimica
Utile: Chimica e Fisica
Programma dell’insegnamento
MODULO 1 – PATHOLOGY AND IMMUNOLOGY
Patologia generale
Concetti di eziologia e patogenesi: cause delle malattie e meccanismi biologici alla base del loro sviluppo; agenti patogeni chimici, fisici e biologici.
Adattamenti cellulari e morte cellulare: iperplasia, ipoplasia, ipertrofia, atrofia, metaplasia, displasia e autofagia; necrosi e apoptosi.
Infiammazione: infiammazione acuta e cronica; eventi vascolari e cellulari, microcircolazione, essudato, chemiotassi, diapedesi e fagocitosi; mediatori dell’infiammazione, citochine, complemento e recettori dell’immunità innata; effetti sistemici dell’infiammazione, febbre, ipertermia e shock settico; infiammazione cronica, ruolo dei macrofagi, granulomi, fibrosi e riparazione tissutale.
Neoplasie: iniziazione e progressione tumorale; classificazione dei tumori benigni e maligni, grading e staging; epidemiologia del cancro, fattori di rischio e sindromi ereditarie; caratteristiche delle cellule maligne, proliferazione incontrollata, evasione dell’apoptosi e riprogrammazione metabolica; eterogeneità tumorale e cellule staminali tumorali; invasione, angiogenesi e metastasi; oncogeni, geni oncosoppressori, RNA non codificanti e stress ossidativo; cancerogenesi chimica e virale e alterazioni del ciclo cellulare.
Malattie genetiche: anomalie cromosomiche, ereditarietà mendeliana, malattie genetiche complesse e correlazioni genotipo-fenotipo.
Immunologia
Struttura e funzione del sistema immunitario: organi linfoidi primari e secondari; principali popolazioni cellulari del sistema immunitario; coordinamento delle risposte immunitarie locali e sistemiche.
Immunità innata: barriere fisiche e chimiche; sistema del complemento; proteine di fase acuta; fagociti; cellule natural killer (NK) e cellule linfoidi innate; recettori per il riconoscimento di pattern molecolari.
Immunità umorale: attivazione e differenziamento dei linfociti B e produzione di anticorpi; classi di immunoglobuline (IgM, IgG, IgA, IgE e IgD); segnalazione attraverso il BCR; risposte T-dipendenti e T-indipendenti; switching isotipico e maturazione dell’affinità; funzioni degli anticorpi: neutralizzazione, opsonizzazione e attivazione del complemento.
Immunità cellulo-mediata: linfociti T helper (Th1, Th2, Th17 e Treg), linfociti T citotossici e cellule T della memoria; presentazione dell’antigene attraverso MHC di classe I e II; processamento dell’antigene attraverso proteasomi, fagolisosomi e autofagia; attivazione e co-stimolazione dei linfociti T; produzione di citochine e principali vie di segnalazione.
MODULO 2 – ADVANCED MOLECULAR BIOLOGY TECHNIQUES
Tecniche di discovery e profiling: introduzione alle tecniche omiche; principi e chimica del sequenziamento e della Next Generation Sequencing (NGS); genomica umana e sue applicazioni; trascrittomica e analisi degli RNA codificanti e non codificanti; single-cell sequencing; spatial omics; biopsia liquida e analisi del DNA circolante; tecniche di analisi delle proteine, proteomica e array; biomarcatori circolanti.
Principi di analisi bioinformatica: Principal Component Analysis (PCA), heatmap e clustering; rappresentazione e visualizzazione dei dati mediante diagrammi di Venn e Sankey; Gene Ontology enrichment; network analysis e pathway analysis.
Tecniche di interferenza ed editing genetico: biologia degli RNA non codificanti e loro applicazioni biotecnologiche; vettori di espressione genica; tecnologie di genome editing.
Attività di laboratorio: estrazione e quantificazione dell’RNA; retrotrascrizione; preparazione di una real-time PCR e analisi dei dati; protocollo di antibody array e analisi dei dati; principi e applicazione di un protocollo di Next Generation Sequencing in ambito diagnostico.
Testi di riferimento
Biologia molecolare - Zlatanova, van Holde - Anno 2018
Genetica e Genomica nelle scienze mediche. Strachan-Goodship-Chinnery
Biotecnologie Molecolari Brown - seconda edizione 2017
Basic Immunology, Shiv Pillai, Abul K. Abbas, Andrew H. Lichtman, Elsevier
Robbins, Basic Pathology, Kumar Abbas Aster, Elsevier Saunders
Bibliografia
Articoli scientifici e materiale fornito dal Professore
Modalità di svolgimento
Lezioni frontali: lezioni classiche con presentazione di diapositive da parte del docente.
Seminari: se durante il corso saranno presenti importanti occasioni di seminari all’interno del circuito universitario, le lezioni saranno integrate
Esperienze lab: conoscenza ed interazione con i laboratori di ricerca e con le principali tecniche diagnostiche e hands on su pratica di laboratorio
Lavori di gruppo: possibili workshop di gruppo con discussioni dinamiche durante il Corso.
Frequenza
Non obbligatoria ma altamente raccomandata
Modalità di esame
Prova scritta per tutti i moduli in modalità quiz risposta multipla.
Per il modulo di biologia molecolare, è prevista anche integrazione con la prova orale, ma solamente successiva al superamento della prova scritta.
Esempi di domande
1 - Descrivere i principali meccanismi dell’infiammazione acuta e cronica, evidenziando il ruolo delle cellule e dei mediatori del sistema immunitario e le possibili conseguenze patologiche.
2 - Descrivere i principi della Next Generation Sequencing (NGS) e discutere le sue principali applicazioni nella genomica, nella trascrittomica e nella diagnostica molecolare.
3 - Descrivere i principi delle tecnologie di genome editing, con particolare riferimento al sistema CRISPR/Cas9, e discuterne le principali applicazioni nella ricerca biomedica e nello studio delle malattie.
4 - Che cosa sono i biomarcatori circolanti e la biopsia liquida? Descrivere le principali molecole che possono essere analizzate, le tecniche utilizzate per la loro identificazione e le possibili applicazioni nella diagnosi e nel monitoraggio delle malattie.
Programmazione delle attività didattiche
- Concetti di
eziologia e patogenesi: cause
delle malattie e meccanismi biologici alla base del loro sviluppo; agenti
patogeni chimici, fisici e biologici. - Adattamenti
cellulari e morte cellulare:
iperplasia, ipoplasia, ipertrofia, atrofia, metaplasia, displasia e autofagia;
necrosi e apoptosi. - Struttura e funzione
del sistema immunitario: organi
linfoidi primari e secondari; principali popolazioni cellulari del sistema
immunitario; coordinamento delle risposte immunitarie locali e sistemiche.
Immunità innata: barriere fisiche e chimiche; sistema del
complemento; proteine di fase acuta; fagociti; cellule natural killer (NK) e
cellule linfoidi innate; recettori per il riconoscimento di pattern molecolari. - Infiammazione:
infiammazione acuta e cronica; eventi vascolari e cellulari, microcircolazione,
essudato, chemiotassi, diapedesi e fagocitosi; mediatori dell’infiammazione,
citochine, complemento e recettori dell’immunità innata; - effetti sistemici
dell’infiammazione, febbre, ipertermia e shock settico; infiammazione cronica,
ruolo dei macrofagi, granulomi, fibrosi e riparazione tissutale. - introduzione alle tecniche omiche; principi e chimica
del sequenziamento e della Next Generation Sequencing (NGS); genomica umana e
sue applicazioni; - Immunità umorale: attivazione e differenziamento dei linfociti B e
produzione di anticorpi; classi di immunoglobuline (IgM, IgG, IgA, IgE e IgD);
segnalazione attraverso il BCR; risposte T-dipendenti e T-indipendenti;
switching isotipico e maturazione dell’affinità; funzioni degli anticorpi:
neutralizzazione, opsonizzazione e attivazione del complemento. - Immunità
cellulo-mediata: linfociti T
helper (Th1, Th2, Th17 e Treg), linfociti T citotossici e cellule T della
memoria; presentazione dell’antigene attraverso MHC di classe I e II;
processamento dell’antigene attraverso proteasomi, fagolisosomi e autofagia;
attivazione e co-stimolazione dei linfociti T; produzione di citochine e
principali vie di segnalazione. - Neoplasie:
iniziazione e progressione tumorale; classificazione dei tumori benigni e
maligni, grading e staging; epidemiologia del cancro, fattori di rischio e
sindromi ereditarie; caratteristiche delle cellule maligne, proliferazione
incontrollata, evasione dell’apoptosi e riprogrammazione metabolica; - eterogeneità tumorale e
cellule staminali tumorali; invasione, angiogenesi e metastasi; oncogeni, geni
oncosoppressori, RNA non codificanti e stress ossidativo; cancerogenesi chimica
e virale e alterazioni del ciclo cellulare. - trascrittomica e analisi degli RNA codificanti e non
codificanti; single-cell sequencing; spatial omics; biomarcatori circolanti. - biopsia liquida e analisi del DNA circolante; tecniche di analisi delle proteine, proteomica e array;
- Malattie genetiche: anomalie cromosomiche, ereditarietà mendeliana,
malattie genetiche complesse e correlazioni genotipo-fenotipo. - Principi di analisi
bioinformatica: Principal
Component Analysis (PCA), heatmap e clustering; rappresentazione e
visualizzazione dei dati mediante diagrammi di Venn e Sankey; Gene Ontology
enrichment; network analysis e pathway analysis. - Tecniche di
interferenza ed editing genetico: biologia degli RNA non codificanti e loro applicazioni biotecnologiche;
vettori di espressione genica; tecnologie di genome editing. - Attività di laboratorio: estrazione e quantificazione dell’RNA;
retrotrascrizione; - Attività di laboratorio: protocollo di antibody array e analisi dei dati;
- Attività di laboratorio: preparazione di una real-time PCR e analisi dei dati;
- Attività di laboratorio: principi e applicazione
di un protocollo di Next Generation Sequencing in ambito diagnostico.
Obiettivi per lo sviluppo sostenibile - Agenda ONU 2030
- Anno accademico2026/2027
- Corso di studio a cui afferisce l’insegnamentoMolecular Biology, Medicinal Chemistry and Computer Science for Pharmaceutical Applications - Biologia molecolare, Chimica farmaceutica e Informatica per applicazioni farmaceutiche
- Presenza obbligatoriaNo
- Linguaeng
- CFU12 CFU distribuiti in 2 moduli didattici integrati
- Durata complessiva120 ore