BRUNO ARCA'
Structure:
Dipartimento di SANITÀ PUBBLICA E MALATTIE INFETTIVE
SSD:
BIOS-08/A

Orari di ricevimento

Tutti i giorni previo appuntamento via telefono o e-mail.

Curriculum

CURRICULUM VITAE
Cognome e nome: Arcà Bruno
Lingue conosciute: Inglese
Attuale posizione: Professore Associato, Biologia Molecolare (BIOS-08/A già BIO/11)
Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive – Sezione di Parassitologia
Sapienza Università di Roma
Tel: +39 06 4991 4413
e-mail: bruno.arca@uniroma1.it

TITOLI ACCADEMICI.
• Laurea in Scienze Biologiche, Università di Napoli "Federico II"
• Dottorato in Biologia Cellulare, Università di Pavia
• Membro del Collegio dei Docenti del Dottorato in “Advances in Infectious Diseases, Microbiology Legal Medicine and Public Health Sciences”, Sapienza Università di Roma (dal 2023)
• Membro del Collegio dei Docenti del Dottorato in Genetica e Biologia Molecolare, Sapienza Università di Roma (dal 2014 al 2022)
• Membro del Collegio dei Docenti della Scuola di Specializzazione in Malattie Infettive e Tropicali, Sapienza Università di Roma (dal 2023)
• Abilitato Prima Fascia 05/E2 (Biologia Molecolare), ASN Bando 2016
• Abilitato Prima Fascia 07/H3 (Malattie Infettive e Parassitarie degli Animali), ASN Bando 2016

POSIZIONI
• Dal 01/09/2020 Professore Associato di Biologia Molecolare (BIO/11)
• 2011-2020: Ricercatore Universitario Biologia molecolare (BIO/11), Dip. di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Facoltà di Farmacia e Medicina, Sapienza Università di Roma.
• 2002 -2011: Ricercatore Universitario, (BIO/11, Biologia molecolare), Dip. di Biologia Strutturale e Funzionale, Facoltà di Scienze MM.FF.NN., Università Federico II, Napoli.
• 2000-2002: Assegnista di Ricerca, Dip. Sanità Pubblica, Sapienza, Roma.
• 1990-2000: Postdoctoral fellow all’IMBB (Institute of Molecular Biology & Biotechnology, Crete, Greece, 6 anni), Sapienza (3 anni), Università Federico II (1 anno), EMBL (European Molecular Biology laboratory, Heidelberg, Germany, 1 anno)
• 1989-1990: borsista CNR, Arco Felice, Napoli.
• 1986-1989: Tirocinante ed ospite laureato, Dip. Genetica e Biologia Generale e Molecolare, Università Federico II, Napoli.

ATTIVITA’ SCIENTIFICA
1. INTERESSI SCIENTIFICI
Biologia molecolare di culicidi di importanza sanitaria con particolare riferimento al vettore di malaria Anopheles gambiae ed ai vettori di arbovirus Aedes albopictus ed Aedes aegypti. Secreti salivari di culicidi vettori e loro ruolo nell’ematofagia, nella trasmissione di patogeni e nelle interazioni patogeno-vettore-ospite. Biologia Molecolare di artropodi vettori. Non-coding RNAs. Malaria ed altre malattie trasmesse da culicidi (arbovirosi). Proteine salivari di culicidi quali strumenti epidemiologici per la valutazione dell’esposizione umana. Manipolazione genetica di insetti di rilevanza medica ed economica.

2. FORMAZIONE E BACKGROUND
Training in Biologia Molecolare, Entomologia Molecolare e Transgenesi in insetti presso Istituti di Ricerca italiani (Università Federico II, Napoli; CNR, Arco Felice, NA) ed europei (IMBB, Heraklion; EMBL, Heidelberg). Dal 1996 al 2002 è parte del gruppo “Malaria” coordinato dal Prof. Mario Coluzzi (Università La Sapienza, Roma) dove acquisisce esperienza in Entomologia Medica e Malariologia. Dal 2002 al 2011 è all’Università Federico II, dove è responsabile del laboratorio di “Biologia Molecolare di Anopheles” presso il Dipartimento di Biologia Strutturale e Funzionale. Dal 30/12/2011 è al Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive della Sapienza Università di Roma, come Ricercatore e poi come Professore Associato di Biologia Molecolare.

3. INDICI BIBLIOMETRICI
È autore di 71 pubblicazioni in extenso, quasi esclusivamente su riviste internazionali peer-reviewed (Impact Factor globale 269.5), e di oltre 120 abstracts presentati a conferenze nazionali o internazionali. Indici bibliometrici ad Aprile 2025 (Scopus): documenti 63; h-index 32; numero di citazioni 3305; citazioni medie per articolo 52.46.

4. ATTIVITA’ DI REVISIONE
Ha svolto e svolge regolarmente l’attività di revisore per le seguenti riviste scientifiche internazionali: American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, Biomed Research International, BMC Biology, BMC Molecular Biology, BMC Genomics, BMC Veterinary Research, Current Opinion in Insect Sciences, Epidemiology and Infection, Experimental Parasitology, FEBS Letters, Frontiers in Immunology, Frontiers in Tropical Diseases, Gene, Genome Biology and Evolution, Insect Biochemistry and Molecular Biology, Infectious Disease Reports, Insect Molecular Biology, Journal of Insect Physiology, Journal of Molecular Recognition, Journal of Infectious Diseases, Malaria Journal, Medical and Veterinary Entomology, Microbes & Infection, Molecular and Biochemical Parasitology, NAR Molecular Medicine, Oxford Open Immunology, Parasite Immunology, Parasites & Vectors, Parassitologia, Parasitology Research, Pathogens, PloS Neglected Tropical Diseases, PloS One, PLoS Pathogens, Proceeding of the Natural Academy of Science USA, Trends in Parasitology, Vector-Borne and Zoonotic Diseases.
Ha servito come valutatore e ricevuto richieste di valutazione di progetti di ricerca per enti ed agenzie di finanziamento nazionali ed internazionali quali: Istituto Pasteur di Parigi, French National Research Agency, European Union, MIUR, European Research Council, German Research Fundation, Czech Science Foundation, Romanian National Research Council.

5. FINANZIAMENTI
Ha ricevuto finanziamenti in qualità di Principal Investigator o Team Leader da:
- European Union (FP4-TMR FMRXCT960017, 1996-2000; BIO4CT98-5020, 1998.1999; FP5-HUMAN POTENTIAL HPRN-CT-2000-00080, 2000-2004; FP6-LIFESCIHEALTH 503578, 2004-2009; FP7 INFRASTRACTURE 228421, 2009-2014; PNRR PE0000007-PE13-INF-ACT-SPOKE 2, 2022-2025)
- UNDP/World Bank/WHO (TDR, 2000-2002);
- MIUR (PRIN 2003, 2003062554_003; PRIN 2010-2011, 2010C2LKKJ_004; PRIN 2015, 2015JXC3JF_002)
- Ministero della Difesa (PNMR 2017 – SENSOR)
- Finanziamenti di Ateneo per la Ricerca (2012, C26A12SLP3; 2014, C26A14AKKH; 2015, C26A159YJT; 2019, RM11916B75AABA65) e per Professori Visitatori (2016).
- Compagnia di San Paolo (2007-2010, Italian Malaria Network)

6. AFFILIAZIONE A SOCIETA’ E NETWORK SCIENTIFICI
- Network di Eccellenza FP6 BioMalPar Biology and Pathology of the Malaria Parasite (2004-2009).
- Management Committee COST 857 Apicomplexan Biology in the post-Genomic Era (2003-2005).
- Centro Interuniversitario di Ricerche sulla Malaria (CIRM-ISS, 2007 ad oggi)
- Network FP7 Infravec, Research capacity for the implementation of genetic control of mosquitoes (2009-2014, http://www.infravec.eu/).
- Network di Eccellenza FP7 EVIMalaR "European Virtual Institute for Malaria Research" (2009-2015, http://www.evimalar.org).
- Società Italiana di Parassitologia (SOIPA).
- Editorial Board member, Tropical Medicine and Infectious Diseases.
- Associate Editor Frontiers Tropical Diseases (Vector Biology section).

ATTIVITÀ DIDATTICA

ATTUALE ATTIVITÀ DIDATTICA
Dal 2012/2013:
- Corso di Laurea “B” in Tecniche della Prevenzione nell’Ambiente e nei Luoghi di Lavoro.
Insegnamento: Elementi di Biologia – Biologia Applicata (polo di Rieti)
- Corso di Laurea “F” in Tecniche di Laboratorio Biomedico.
Insegnamento: Basi Biochimiche delle Scienze Diagnostiche – Biologia Molecolare (polo di Rieti)
Dal 2018/2019:
- Corso di Laurea Magistrale in Farmacia.
Insegnamento: Biologia Molecolare
Dal 2021/2022
- Corso di Laurea Magistrale in Medicina e Chirurgia HT
Insegnamento: Biochimica - Biologia Molecolare

PRECEDENTE ATTIVITÀ DIDATTICA
Dal 2002 al 2011, titolare (supplenza/affidamento) dei seguenti insegnamenti fondamentali presso il CdL in Scienze Biologiche e CdL Magistrale in Biologia, Università di Napoli Federico II:
- Biologia Molecolare I (2002/2003);
- Biologia Molecolare II (2004/2005);
- Biologia Molecolare Avanzata (2005/2009);
- Biologia Molecolare Applicata (2005/2009);
- Biologia Molecolare e Bioinformatica (2009/2010, 2011/2012).

Esercitazioni di laboratorio:
- Biologia Molecolare (2002-2004), CdL in Biologia Generale e Applicata, Università di Napoli Federico II.
- Laboratorio di Biologia II – Biologia Molecolare (2004-2005, 2006-2007) CdL in Biologia Generale e Applicata, Università di Napoli Federico II.

Lezioni nell’ambito di insegnamenti/dottorati/scuole di specializzazione:
- Seminari di Didattica dell’Evoluzione (2003-2004), CdL in Biologia Generale e Applicata, Università di Napoli Federico II.
- Dottorato in Biologia Avanzata (2006-2011), Università di Napoli Federico II.
- Scuola di Specializzazione in Microbiologia e Virologia (1999-2001, 2011-2014), Sapienza Università di Roma.
- Virologia e Parassitologia Molecolare (2013-2017), CdL Magistrale in Biotecnologie Mediche, Sapienza” Università di Roma.

ATTIVITÀ DI SUPERVISIONE E TRAINING
Ha supervisionato numerosi studenti nella preparazione di tesi di Laurea Triennale e Magistrale (Università Federico II Napoli, Sapienza Università di Roma), 1 master student dall’Università Paris Sud (Parigi, Francia), 6 studenti di Dottorato dalla Sapienza Università di Rome and 3 postdoctoral fellows. Ha co-supervisionato 1 PhD student nell’ambito del EVIMalaR’s International PhD Programme finanziato dall’Unione Europea (sede del PhD student Università di Montpellier, Francia).

REVISIONE DI TESI DI DOTTORATO E MEMBRO COMMISSIONE GIUDICATRICE
Università di Perugia, Dottorato in “Patogenesi Molecolare, Immunologia e Controllo degli Agenti Trasmissibili che Causano le Principali Malattie Associate alla Povertà (Malaria, AIDS e Tubercolosi)”
- 2016, XXVIII cycle. Dottoranda Carla Siniscalchi: “Development of gene drive systems based on TALENs and ZFNs as alternatives to HEGs for vector control”
Ruolo: revisore esterno e membro commissione
- 2017, XXVIII cycle. Dottoranda Alessi Cagnetti: “Characterizing and engineering of the An. gambiae Y chromosome for vector control”
Ruolo: revisore esterno e membro commissione

Università di Perugia, Dottorato in “Systems Biology in Immunity and Infectious Pathologies”
- 2017, XXX cycle. Dottorando Francesco Papa: “Hematophagous lifestyle drives rapid evolution of female biased genes in the genus of Anopheles malaria mosquitoes”
Ruolo: revisore esterno
- 2017, XXX cycle. Dottorando Chrysanthi Taxiarchi: “Cellular resolution of the transcriptional profile of mosquito spermatogenesis and its potential application for vector control”
Role: revisore esterno
- 2018, XXXI cycle. Dottoranda Anastasia Accoti: “Symbiotic based study for advance knowledge and control of mosquito-borne diseases”
Ruolo: revisore esterno

Charles University, Faculty of Science, Prague (CZ) PhD Programme in “Parasitology”
- 2019. Dottoranda Mgr. Petra Cikrtova: “Characterization and antigenic properties of salivary yellow-related proteins in phlebotomine sand flies”
Ruolo: revisore esterno e membro della commissione

IUSS Scuola Universitaria Superiore di Pavia, Dottorato in “Biomolecular Sciences and Biotechnology”
- 2023, XXXV ciclo. Dottoranda Irene Arnoldi: “Beyond the bite of the tiger mosquito: the multiple roles of Aedes albopictus saliva”
Ruolo: revisore esterno

Università di Perugia, Dottorato in “Biotecnologie”
- 2023, XXXVI ciclo. Dottorando Riccardo Focaia: “TgPQ: a new Toxoplasma gondii protein involved in C-mannosylation”
Ruolo: revisore esterno
- 2024, XXXVI ciclo. Dottoranda Silvia Masci: “Detection and characterization of the TgATG2 protein in Toxoplasma gondii following the elongation complex of the autophagic pathway”
Ruolo: membro commissione giudicatrice

PUBBLICAZIONI
1) Geraci G, Arcà B, Cirotto C, Fucci L. (1991). The hemoglobins in the ontogeny of the chicken embryo. In Macromolecules in the functioning cell. Proceedings of the 6th Soviet-Italian Symposium (A.A. Bayev, A.D. Mirzabekov, M.Y.Timofeeva, eds). Pushchino 1991, 6: 106-125.
2) De Petrocellis L, Di Marzo V, Arcà B, Gavagnin M, Minei R, Cimino G. (1991). Effect of diterpenoidic diacylglycerols on tentacle regeneration. Compar Biochem and Physiol 100C, 3: 603-607.
3) Konsolaki M, Sanicola M, Kozlova T, Arcà B, Savakis C, Gelbart WM, Kafatos FC. (1992). FLP-mediated Intermolecular recombination in the Cytoplasm of Drosophila embryos. New Biol 4: 551-557.
4) Loukeris TG, Arcà B,Livadaras I, Dialektaki G, Savakis C. (1995). Introduction of the transposable element Minos into the germline of Drosophila melanogaster. Proc Natl Acad Sci USA 92: 9485-9489. [abstract]
5) Loukeris TG, Livadaras I, Arcà B, Zabalou S, Savakis C. (1995). Gene transfer into the Medfly, Ceratitis capitata, with a Drosophila hydei transposable element. Science 270: 2002-2005. [abstract]
6) Arcà B, Savakis C. (1997). The polymerase chain reaction (PCR) and RT-PCR. In The molecular biology of insect disease vectors: a method manual. (J.M. Crampton , C.B. Beard and C. Louis, eds), pp. 244-260. Chapman & Hall, London. ISBN 978-94-010-7185-7.
7) Arcà B, Zabalou S, Loukeris TG, Savakis C. (1997) Mobilization of a Minos transposon in Drosophila melanogaster chromosomes and chromatid repair by heteroduplex formation. Genetics 145, 267-279. [abstract]
8) Dimitri P, Arcà B, Berghella L, Mei E. (1997). Genetic instability of heterochromatin following transposition of the Line-like I factor in Drosophila melanogaster. Proc Natl Acad Sci USA 94: 8052-8057. [abstract]
9) Arcà B, Lombardo F, Capurro M, della Torre A, Dimopoulos G, James AA, Coluzzi M (1999) Trapping cDNAs encoding secreted proteins from the salivary glands of the malaria vector Anopheles gambiae. Proc Natl Acad Sci USA 96: 1516-1521. [abstract]
10) Arcà B, Lombardo F, Capurro M, della Torre A, Spanos L, Dimopoulos G, Louis C, James AA, Coluzzi M. (1999) Salivary gland-specific gene expression in the malaria vector Anopheles gambiae. In The Malaria Challenge after One Hundred Years of Malariology - Parassitologia 41: 483-487.
11) Lombardo F, Di Cristina M, Spanos L, Louis C, Coluzzi M, Arcà B. (2000) Promoter sequences of the putative Anopheles gambiae apyrase confer salivary gland expression in Drosophila melanogaster. J Biol Chem 275: 23861 23868. [abstract]
12) Arcà B, Savakis C. (2000) Distribution of the transposable element Minos in the genus Drosophila. Genetica 108, 263-267. [abstract]
13) Arcà B, Lombardo F, Lanfrancotti A, Coluzzi M. (2001) Malaria: prospettive biotecnologiche di lotta al vettore. Atti dell’Accademia di Medicina di Torino 2001, 226-239.
14) Luoni G, Verra F, Arcà B, Sirima BS, Troye-Blomberg M, Coluzzi M, Kwiatowski D, Modiano D. (2001) Antimalarial antibody levels and IL4 polymorphism in the Fulani of West Africa. Genes and Immunity 2: 411-414. [abstract]
15) Arcà B, Lombardo F, Lanfrancotti A, Spanos L, Veneri M, Louis C, Coluzzi M. (2002) A cluster of four D7-related genes is expressed in the salivary glands of the african malaria vector Anopheles gambiae. Insect Mol Biol 11: 47-55. [abstract]
16) Lanfrancotti A, Lombardo F, Santolamazza F, Veneri M, Castrignanò T, Coluzzi M, Arcà B. (2002) Novel cDNAs encoding salivary proteins from the malaria vector Anopheles gambiae. FEBS letters 517: 67-71. [abstract]
17) Ascoli V, Manno D, Guzzinati S, Tognazzo S, Zambon P, Arcà B, Costantini C, Coluzzi M. (2002) La puntura di artropodi ematofagi quale possibile cofattore nella trasmissione dell’HHV8 e nell’espressione del sarcoma di Kaposi. Rend Fis Acc Lincei 13: 71-88. [abstract]
18) Coluzzi M, Manno D, Guzzinati S, Tognazzo S, Zambon P, Arcà B, Costantini C, Ascoli V. (2002) The bloodsucking arthropod bite as possible cofactor in the transmission of human herpesvirus-8 infection and in the expression of Kaposi’s sarcoma disease. Parassitologia , 44: 123-129.
19) Dimitri P, Junakovic N, Arcà B. (2003) Colonization of heterochromatic genes by transposable elements in Drosophila. Mol. Biol. Evol., 20: 503-512. [abstract]
20) Ascoli V, Zambon P, Manno D, Guzzinati S, Zorzi M, Arcà B, Costantini C, Coluzzi M. (2003) Variability in the incidence of classic Kaposi's sarcoma in the Veneto region, Northern Italy. Tumori 89 (2):122-4.
21) Verra F, Luoni G, Calissano C, Troye-Blomberg M, Perlmann P, Perlmann H, Arcà B., Sirima Bienvenu Sodiomon, Konaté A., Coluzzi M., Kwiatkowski D., Modiano D.. (2004) IL4-589C/T polymorphism and IgE levels in severe malaria. Acta Tropica 90:205-209. [abstract]
22) Lombardo F, NolanT, Lycett G, Lanfrancotti A, Stich N, Catteruccia F, Louis C, Coluzzi M, Arcà B. (2005) An Anopheles gambiae salivary gland promoter analysis in Drosophila melanogaster and Anopheles stephensi. Insect Mol. Biol. 14: 207-216. [abstract]
23) Arcà B, Lombardo F, Valenzuela JG, Francischetti IMB, Coluzzi M, Ribeiro JMC. (2005) An updated catalog of salivary gland transcripts in the adult female mosquito, Anopheles gambiae. J Exp Biol , 208: 3971-3986. [abstract]
24) Rossi F, Lombardo F, Paglino A, Cassani C, Miglio G, Arcà B, Rizzi M. (2005) Identification and biochemical characterization of the Anopheles gambiae 3-hydroxykynurenine transaminase. FEBS J., 272: 5653-5662. [abstract]
25) Rossi F, Garaviglia S, Giovenzana GB, Arcà B, Li J, Rizzi M. (2006) Crystal structure of the Anopheles gambiae 3-hydroxykynurenine transaminase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 103, 5711-5716. [abstract]
26) Calvo E, Pham VM, Lombardo F, Arcà B, Ribeiro JCM. (2006) The sialotranscriptome of adult male Anopheles gambiae mosquitoes. Insect Biochem Mol Biol 36, 570-575. [abstract]
27) Lombardo F, Lanfrancotti A, Mestres-Simòn, Rizzo C, Coluzzi M, Arcà B. (2006) At the interface between parasite and host: the salivary glands of the African malaria vector Anopheles gambiae. Parassitologia 48: 573-580.
28) Ribeiro JMC, Arcà B, Lombardo F, Calvo E, Pham VM, Chandra PK, Wikel SK. (2007) An annotated catalogue of salivary gland transcripts in the adult female mosquito Aedes aegypti. BMC Genomics 8: 6. [abstract]
29) Arcà B, Lombardo F, Francischetti IMB, Pham VM, Mestres-Simon M, Andersen JF, Ribeiro JMC. (2007) An insight into the sialome of the adult female mosquito Aedes albopictus. Insect Biochem. Mol. Biol. 37: 107-127. [abstract]
30) Poinsignon A, Cornelie S, Mestres-Simon M, Lanfrancotti A, Rossignol M, Boulanger D, Cisse B, Sokhna C, Arcà B, Simondon F, Remoue F. (2008) Novel peptide marker corresponding to Salivary Protein gSG6 potentially identifies exposure to Anopheles bites. PLoS ONE 2008 3(6): e2472. [abstract]
31) della Torre A, Arcà B, Favia G, Petrarca V , Coluzzi M. The role of research in molecular entomology in the fight against malaria vectors. XXV Congresso Società Italiana di Parassitologia 18-21 Giugno 2008, Pisa, Italy. Parassitologia 50: 137-140.
32) Paglino A, Lombardo F, Arcà B, Rizzi M, Rossi F. (2008) Purification and biochemical characterization of a recombinant Anopheles gambiae Tryptophane 2,3-dioxygenase expressed in Escherichia coli. Insect Biochem. Mol. Biol. 38: 871-876. [abstract]
33) Lombardo F, Lycett G, Lanfrancotti A, Coluzzi M, Arcà B. (2009) Analysis of Apyrase 5’ upstream region validates improved Anopheles gambiae transformation technique. BMC Research Notes 2009 2:24. [abstract]
34) Lombardo F, Ronca R, Rizzo C, Mestres-Simòn M, Lanfrancotti A, Currà C, Fiorentino G, Bourgouin C, Ribeiro JM, Petrarca V, Ponzi M, Coluzzi M, Arcà B. (2009) The Anopheles gambiae salivary protein gSG6: an anopheline-specific protein with a blood-feeding role. Insect Biochem Mol Biol 39: 457-66. [abstract]
35) Ribeiro JMC, Arcà B. (2009) From Sialomes to the Sialoverse: An insight into Salivary Potion of Blood Feeding Insects. In: Physiology of Human and Animal Disease Vectors (Simpson SJ & Casas J, eds.). Adv Insect Physiol 37, pp 59-118. Academic Press, Elsevier Ltd. ISBN 978-0-12-374829-4 [abstract]
36) Ribeiro JM, Mans BJ, Arcà B. (2010) An insight into the sialome of blood-feeding Nematocera. Insect Biochem. Mol. Biol. 40: 767-784. [abstract]
37) Salvemini M, Mauro U, Lombardo F, Milano A, Zazzaro V, Arcà B, Polito LC, Saccone G. (2011) Genomic organization and splicing evolution of the doublesex gene, a Drosophila regulator of sex differentiation, in the dengue and yellow fever mosquito Aedes aegypti. BMC Evol Biol 11 (1): 41. [abstract]
38) Rizzo C*, Ronca R*, Fiorentino G, Verra F, Mangano V, Poinsignon A, Sirima SB, Nébié I, Lombardo F, Remoue F, Coluzzi M, Petrarca V, Modiano D, Arcà B. (2011) Humoral response to the Anopheles gambiae salivary protein gSG6: a serological indicator of exposure to Afrotropical malaria vectors. PloS ONE 6(3):e17980. [abstract]
39) Rizzo C*, Ronca R*, Fiorentino G, Mangano V, Sirima SB, Nébié I, Petrarca V, Modiano D, Arcà B. (2011) Wide cross-reactivity between Anopheles gambiae and Anopheles funestus SG6 salivary proteins supports exploitation of gSG6 as a marker of human exposure to major malaria vectors in tropical Africa. Malaria Journal 10: 206. [abstract]
40) Stone W, Bousema T, Jones S, Gesase S, Hashim R, Gosling R, Carneiro I, Chandramohan D, Theander T, Ronca R, Modiano D, Arcà B, Drakeley C. (2012) IgG Responses to Anopheles gambiae Salivary Antigen gSG6 Detect Variation in Exposure to Malaria Vectors and Disease Risk PLoS ONE 7(6): e40170. [abstract]
41) Ronca R*, Kotsyfakis M*, Lombardo F*, Rizzo C, Currà C, Ponzi M, Fiorentino G, Ribeiro JMC, Arcà B. (2012) The Anopheles gambiae cE5, a tight- and fast-binding thrombin inhibitor with post-transcriptionally regulated salivary-restricted expression. Insect Biochem Mol Biol 42 (9): 610-620. [abstract]
42) Proietti C, Verra F, Bretscher MT, Stone W, Kanoi BN, Balikagala B, Egwang TG, Corran P, Ronca R, Arcà B, Riley EM, Crisanti A, Drakeley C, Bousema T. (2013) Influence of infection on malaria-specific antibody dynamics in a cohort exposed to intense malaria transmission in northern Uganda. Parasite Immunol 35: 164-173. [abstract]
43) Arcà B, Struchiner CJ, Pham VM, Sferra G, Lombardo F, Pombi M, Ribeiro JM. (2014) Positive selection drives accelerated evolution of mosquito salivary genes associated with blood-feeding. Insect Mol Biol 23: 122-131. [abstract]
44) Arcà B, della Torre A, Pombi M. (2014). Gli Insetti Vettori di Patogeni Animali. Cap. 16 in: Gli Insetti e il loro Controllo (a cura di F. Pennacchio), pp. 443-477. Liguori Editore S.r.l., Napoli. ISBN 978-88-207-5351-1.
45) Rizzo C*, Ronca R*, Lombardo F, Mangano V, Sirima SB, Nébié I, Fiorentino G, Troye-Blomberg M, Modiano D, Arcà B. (2014) IgG1 and IgG4 antibody response to the Anopheles gambiae salivary protein gSG6 in the sympatric ethnic groups Mossi and Fulani in a malaria hyperendemic area of Burkina Faso. PloS ONE 9(4):e96130. [abstract]
46) Rizzo C, Lombardo F, Ronca R, Mangano V, Sirima SB, Nébié I, Fiorentino G, Modiano D, Arcà B. (2014) Differential antibody response to the gSG6 and cE5 Anopheles gambiae salivary proteins in individuals naturally exposed to bites of malaria vectors. Parasite & Vectors 7(1): 549. [abstract]
47) Neafsey DE, Waterhouse RM, Abai MR, Aganezov SS, Alekseyev MA, Allen JE, Amon J, Arcà B, Arensburger P, Artemov G, Assour LA, Basseri H, Berlin A, Birren BW, Blandin SA, Brockman AI, Burkot TR, Burt A, Chan CS, Chauve C, Chiu JC, Christensen M, Costantini C, Davidson VLM, Deligianni E, Dottorini T, Dritsou V, Gabriel SB, Guelbeogo WM, Hall AB, Han MV, Hlaing T, Hughes DST, Jenkins AM, Jiang X, Jungreis I, Kakani EG, Kamali M, Kemppainen P, Kennedy RC, Kirmitzoglou IK, Koekemoer LL, Laban N, Langridge N, Lawniczak MKN, Lirakis M, Lobo NF, Lowy E, MacCallum RM, Mao C, Maslen G, Mbogo C, McCarthy J, Michel K, Mitchell SN, Moore W, Murphy KA, Naumenko AN, Nolan T, Novoa EM, O'Loughlin S, Oringanje C, Oshaghi MA, Pakpour N, Papathanos PA, Peery AN, Povelones M, Prakash A, Price DP, Rajaraman A, Reimer LJ, Rinker DC, Rokas A, Russell TL, Sagnon NF, Sharakhova MV, Shea T, Simão FA, Simard F, Slotman MA, Somboon P, Stegniy V, Struchiner CJ, Thomas GWC, Tojo M, Topalis P, Tubio JMC, Unger MF, Vontas J, Walton C, Wilding CS, Willis JH, Wu YC, Yan G, Zdobnov EM, Zhou X, Catteruccia F, Christophides GK, Collins FH, Cornman RS, Crisanti A, Donnelly MJ, Emrich SJ, Fontaine MC, Gelbart W, Hahn MW, Hansen IA, Howell PI, Kafatos FC, Kellis M, Lawson D, Louis C, Luckhart S, Muskavitch MAT, Ribeiro JM, Riehle MA, Sharakhov IV, Tu Z, Zwiebel LJ, Besansky NJ. (2015) Highly evolvable malaria vectors: the genomes of 16 Anopheles mosquitoes. Science 347 (6217): 1258522. Epub 2014 Nov 27. [abstract]
48) Marie A, Ronca R, Poinsignon A, Lombardo F, Drame PM, Cornelie S, Besnard P, Le Mire J, Fiorentino G, Fortes F, Carnevale P, Remoue F, Arcà B. (2015) The Anopheles gambiae cE5 salivary protein: a sensitive biomarker to evaluate the efficacy of insecticide-treated nets in malaria vector control. Microbes & Infection 17(6): 409-16. [abstract]
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