Ritratto di fabrizio.lombardo@uniroma1.it

Inizio del corso di Parassitologia Molecolare - LM in GBM - 20203-24

 

Buongiorno a tutti,

il corso di Parassitologia Molecolare comincerà mercoledì 6 marzo alle ore 9:00 presso l'Aula Serra I, Edificio CU022, Genetica.

Proseguirà venerdì 8 marzo e tutti i mercoledì e venerdì sempre alle ore 9:00 presso l'aula Serra I.

Resto a disposizione per qualsiasi informazione o dubbio.

Cordiali saluti,

Fabrizio Lombardo

 

 

_____________________________________________________________________

 

 

Buongiorno a tutti,

inoltro il programma del ciclo di seminari di Parassitologia Molecolare 2023-24.

Chiunque fosse interessato può partecipare collegandosi all'indirizzo Meet.

Resto a disposizione se servissero altre informazioni.

 

 

MOLECULAR PARASITOLOGY SEMINARS 2023-24 

Online, 2:30 pm CET 

https://meet.google.com/jkm-ewup-fye

 

October 4th 2023, Wednesday 

Maryse Lebrun (University of Montpellier, France) 

An evolution-based approach to decipher the rhoptry secretory machinery in Apicomplexa. 

 

November 8th, Wednesday 

Michael Blackman (The Francis Crick Institute, London, UK) 

Malaria parasite egress from the host red blood cell: a tale of PKG, proteases and puzzles. 

 

December 6th, Wednesday 

Sara Epis (University of Milan) 

The protozoan Leishmania tarentolae: examples of biotechnological and biomedical applications. 

 

January 10th, Wednesday 

Marco Salvemini (University of Naples Federico II) 

Functional genomics and transcriptomics in the study of sex determination in Nematocera vector. 

 

February 8th, Thursday 

Rita Tewari (University of Nottingham, UK) 

Divide and Rule: atypical kinases rule in malaria parasite cell division and transmission. 

 

March 6th, Wednesday 

Tony Nolan (Liverpool School of Trop. Med. and Hygiene, Liverpool, UK) 

The use of genetic modification for the study and control of mosquito vectors of malaria. 

 

April 10th, Wednesday 

Natalia Tiberti (IRCCS Ospedale Sacro Cuore Don Calabria, Negrar di Valpolicella, Verona) Proteomics approaches to study host-pathogen interaction in human strongyloidiasis. 

 

May 8th, Wednesday 

Roberto Feuda (University of Leicester, UK) 

The evolution of the sensory system in mosquitoes. 

 

 

Organizing committee: 

Serena Cavallero, serena.cavallero@uniroma1.it, Sapienza Università di Roma

Manlio Di Cristina, manlio.dicristina@unipg.it, Università di Perugia

Fabrizio Lombardo, fabrizio.lombardo@uniroma1.it, Sapienza Università di Roma

Anna Olivieri, anna.olivieri@iss.it, Istituto Superiore di Sanità

Marco Pombi, marco.pombi@uniroma1.it, Sapienza Università di Roma

Furio Spano, furio.spano@iss.it, Istituto Superiore di Sanità

 

 

 

 

Insegnamento Codice Anno Corso - Frequentare Bacheca
ADE AAF1433 2023/2024
ADE AAF1433 2023/2024
PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 10592824 2023/2024
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2023/2024
VIROLOGIA E PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 1026831 2023/2024
ADE AAF1433 2022/2023
ADE AAF1433 2022/2023
PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 10592824 2022/2023
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2022/2023
VIROLOGIA E PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 1026831 2022/2023
ADE AAF1433 2021/2022
ADE AAF1433 2021/2022
PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 10592824 2021/2022
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2021/2022
VIROLOGIA E PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 1026831 2021/2022
ADE AAF1433 2020/2021
ADE AAF1433 2020/2021
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2020/2021
PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 10592824 2020/2021
VIROLOGIA E PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 1026831 2020/2021
ADE AAF1433 2019/2020
ADE AAF1433 2019/2020
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2019/2020
PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 10592824 2019/2020
VIROLOGIA E PARASSITOLOGIA MOLECOLARE 1026831 2019/2020
ADE AAF1433 2018/2019
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2018/2019
ADE AAF1433 2017/2018
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2017/2018
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2017/2018
ADE AAF1433 2016/2017
METODOLOGIE DIAGNOSTICHE DI MICROBIOLOGIA 1036447 2016/2017

Tutti i giorni, previo accordo via e-mail

Curriculum vitae di Fabrizio Lombardo

Professore Associato
Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive
Sapienza Università di Roma; P.le Aldo Moro, 5 00185, Roma
Tel: +39 06 4969 4326; Fax: +39 06 4991 4653;
Email: fabrizio.lombardo@uniroma1.it; f.lombardo73@gmail.com
Skype: fabrilombardo

FORMAZIONE
2004: Dottorato in Genetica e Biologia Molecolare, Sapienza Università di Roma. Tesi dal titolo: Molecular studies of the salivary glands of the African malaria vector Anopheles gambiae: a tissue-specific promoter analysis . Supervisori: Dr. Bruno Arcà, Prof. Irene Bozzoni.
1997: Laurea in Scienze Biologiche, Sapienza Università di Roma. Tesi dal titolo: Analisi molecolare del promotore del gene murino Dri27, la cui espressione è regolata nel corso dello sviluppo e del differenziamento epiteliale intestinale . Supervisori: Dr. Giuditta Perozzi, Prof. Irene Bozzoni.

ESPERIENZE
30 Dicembre 2018 oggi: Professore Associato (L. 240/10) presso il Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Sapienza Università di Roma (SSD: VET/06).
30 Dicembre 2015 29 Dicembre 2018: Ricercatore a tempo determinato (RTD-b, tenure track) presso il Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Sapienza Università di Roma (SSD: VET/06).
Aprile 2010 Dicembre 2015: Assegnista presso il Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Sapienza Università di Roma.
2009 2010: Borsista dell Istituto Pasteur Fondazione Cenci-Bolognetti.
2007 2009: Research Associate presso la Division of Cell and Molecular Biology, Department of Life Sciences, Imperial College, London (Prof. Fotis Kafatos and Dr. Giorgos Christophides Lab).
2004 2007: Assegnista presso il Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Sapienza Università di Roma (PI, Dr. Bruno Arcà).
2004: Borsista dell Istituto Pasteur Fondazione Cenci-Bolognetti (4 mesi).
2000 2004: Dottorando presso il Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Sapienza Università di Roma (PI, Dr. Bruno Arcà); attività di ricerca presso l Imperial College, London (2 mesi) e l EMBL, Heidelberg (3 mesi, Borsa di studio finanziata dal Programma TMR).
1999 2000: Borsista della Sapienza per l estero: collaborazione con l Institute of Molecular Biology and Biotechnology, FORTH, Heraklion, Creta (PI, Prof. Kitsos Louis).
1997 1998: Tirocinante presso l Istituto di Parassitologia, Sapienza Università di Roma (PIs, Prof. Mario Coluzzi e Dr. Bruno Arcà).
1995 1997: Studente interno presso l Istituto Nazionale della Nutrizione (INN-INRAN) di Roma (PIs, Prof. Sancia Gaetani e Dr. Giuditta Perozzi).

ATTIVITÀ SCIENTIFICHE
Autore di 45 pubblicazioni scientifiche (43 articoli su riviste con peer-review , 2 capitoli di libro) e di circa 60 abstracts presentati in conferenze nazionali ed internazionali. Indici bibliometrici (Scopus, Elsevier, 28/03/2022): H-index: 20. Citazioni complessive: 1386. Impact Factor (ISI-JCR, 2017) totale: 126,06; Impact Factor/pubblicazione: 3,85.

Abilitazione alla Professione di Biologo (Esame di Stato, Novembre 2000).
Iscritto al Registro REPRISE del MIUR (2017-oggi).
Revisore di progetti presentati alla French National Research Agency (ANR) (2018-oggi).
Peer Reviewer per diverse riviste scientifiche internazionali: Genome Research (Cold Spring Harbor Laboratory Press), BMC Genomics, Parasites and Vectors, Malaria Journal (BioMed Central Ltd.), PLos One, PLoS Neglected Tropical Diseases (Public Library of Science), Parasitology Research, Molecular Genetics and Genomics (Springer), Insect Molecular Biology (The Royal Entomological Society), Experimental Parasitology (Elsevier), BioMed Research International (Hindawi), Expert Reviews in Molecular Medicine (Cambridge University Press), etc.
Membro dell'Editorial Board della rivista Genes, MDPI (2021-oggi).
Review Editor per la rivista Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2020-oggi).

Membro della Società Italiana di Parassitologia (SoiPa, 2000-2006, 2012-oggi).
Membro della Biochemical Society, UK (2009).
Membro del Comitato Organizzatore e del Comitato Scientifico del XVIII Congresso Nazionale SOIPA, Roma 24-27 Giugno 2014.
Membro del Comitato Organizzatore e del Comitato Scientifico del Corso intitolato: Corso di base sull analisi di dati genetico-molecolari , Dipartimento di Sanità Pubblica e Malattie Infettive, Roma 23-24 Giugno 2014.

PRINCIPALI FINANZIAMENTI
Responsabile di un finanziamento Sapienza Research Project (Bando di Ateneo 2021, Progetti Medi): "Dissecting the molecular interplay between the tiger mosquito Aedes albopictus and the chikungunya arbovirus".
Responsabile di un finanziamento nell ambito del progetto europeo INFRAVEC2 (2019): Identification of novel Plasmodium molecular markers to study malaria transmission in An. coluzzii mosquitoes (Integrating Activity number: #5876).
Responsabile di un finanziamento Sapienza Research Project (Bando di Ateneo 2016, Progetti Medi): Transcriptome profiling of the immune repertoire of the tiger mosquito Aedes albopictus, a competent vector for several human arboviruses .
Responsabile di un finanziamento Sapienza Professori Visitatori per lo svolgimento di attività di ricerca congiunta , invito per la Prof.ssa Susan K. Pierce dell NIH (prot. C26V17KTLH, anno 2016).
Beneficiario del Finanziamento delle Attività Base di Ricerca (FFABR-2017) per l anno 2017.
Responsabile di un finanziamento nell ambito del progetto europeo INFRAVEC (2011): Defining the olfactory repertoire of the tiger mosquito Aedes albopictus (Integrating Activity number: 228421).
Componente di gruppi di ricerca beneficiari dei seguenti finanziamenti: 1999-2001, WHO/TDR (Research and Training in Tropical Disease); 2000-2004, EU, Research Training Network (HPRN-CT-2000-00080); 2004-2009, EU, Network of Excellence (LSHP-CT-2004-503578) Biology and Pathology of Malaria Parasite (BioMalPar); 2012-2015, PRIN - MIUR, SKINFLAM project; 2016-2019, PRIN - MIUR, Project Prot. 2015JXC3JF; 2012-2015, Sapienza Research Project (C26A12SLP3); 2013-2016, Sapienza Research Project (C26A13H2H7); 2014-17, Sapienza Research Project (C26A14AKKH); 2017-2020 PRIN - MIUR (2015JXC3JF_002); 2018-21, Sapienza Research Project; 2019-22, Sapienza Research Project; 2020-23, Sapienza Research Project.

PRINCIPALI ATTIVITÀ DIDATTICHE
Docente di Parassitologia Molecolare (6 CFU), CLM Genetica e Biologia Molecolare, Facoltà di Scienze Matematiche, Fisiche e Naturali (2019/20 oggi).
Docente di Parassitologia Molecolare (3 CFU), C.I. Virologia e Parassitologia Molecolare, CLM Interfacoltà in Biotecnologie Mediche Curriculum Biomolecolare (2019/20 oggi).
Docente di Parassitologia (1 CFU)/Metodologie Diagnostiche di Microbiologia e di Attività Didattica Elettiva (ADE, 1 CFU) nel Corso di Laurea F di Tecniche di Laboratorio Biomedico, Facoltà di Medicina ed Odontoiatria, Sapienza Università di Roma (2015/16 oggi).
Docente di Attività Didattica Elettiva (ADE, 2 CFU) nel Corso di Laurea E di Tecniche di Laboratorio Biomedico, Facoltà di Medicina ed Odontoiatria, IRCCS Neuromed Pozzilli (2018/19 oggi).
Cultore della Materia in Parassitologia (corso di laurea D ) presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia, Sapienza Università di Roma (2005-2007; 2009-2011, 2012 2019).
Docente di Parassitologia Molecolare in lezioni seminariali nei seguenti corsi di laurea presso Sapienza, Università di Roma: Biotecnologie Mediche, Medicina e Chirurgia corso D e corso A , Medicina e Chirurgia corso F e Tecniche di Laboratorio Biomedico corso B , Ospedale C. Forlanini (2010 oggi).
Supervisore di tesi di Laurea Triennale (corso di laurea di Tecniche di Laboratorio Biomedico, corso di laurea in Biotecnologie Interfacoltà, Sapienza Università di Roma), tesi di Laurea Magistrale (corso di laurea in Genetica e Biologia Molecolare nella Ricerca di Base e Biomedica e corso di laurea in Biotecnologie Genomiche, Industriali ed Ambientali, Facoltà di Scienze Matematiche, Fisiche e Naturali) e di Final Year Undergraduate Student , Faculty of Life Sciences, Imperial College, London (2006 oggi).

SEMINARI SU INVITO
15 Marzo 2018: Convegno: La prospettiva One Health nella diagnostica infettivologica , III Edizione, Corso ECM dell Ospedale Pediatrico Bambino Gesù. Relazione dal titolo: Interazioni molecolari della zanzara tigre Aedes Albopictus con patogeni ed ospiti .
13 Ottobre 2017: Master di II livello in Allergologia ed Immunologia Pediatrica Avanzata, Policlinico di Tor Vergata e Scuola di pediatria, Ospedale Pediatrico Bambino Gesù. Relazione dal titolo: Interazioni molecolari della zanzara tigre con patogeni e ospiti .
18 Novembre 2016: Convegno: La prospettiva One Health nella diagnostica infettivologica , Corso ECM dell Ospedale Pediatrico Bambino Gesù. Relazione dal titolo: Interazioni molecolari della zanzara tigre Aedes Albopictus con patogeni ed ospiti .
16 Aprile 2015: Convegno: La Parassitologia ai tempi della globalizzazione , Corso ECM dell Ospedale Pediatrico Bambino Gesù. Relazione dal titolo: Next Generation Sequencing e Real Time PCR nella ricerca e nella diagnosi parassitologica .

PRINCIPALI COLLABORAZIONI
2010 oggi: Dr. Bruno Arcà, Sapienza Università di Roma: studi sulle ghiandole salivari di vettori di interesse sanitario.
2008 oggi: Prof. George K. Christophides, Imperial College London, UK: studi sull immunità innata di insetti vettori.
2003 oggi: Prof. Josè M. Ribeiro, NIAID, National Institute of Health, NIH, USA: trascrittomi salivari di insetti vettori ed analisi funzionali di proteine salivari.
1998 oggi: Prof. Kitsos Louis, IMBB, FORTH, Grecia: studi molecolari e genomici su zanzare vettrici, An. gambiae e Ae. albopictus.
2008 oggi: Dr. Marco Salvemini, Federico II Università di Napoli: trascrittomica di insetti vettori ed altri parassiti di interesse sanitario.
2010 oggi: Prof. David Modiano, Sapienza Università di Roma: studi su marcatori salivari di esposizione; studi su metodi molecolari diagnostici per Plasmodium falciparum.
2013 oggi: Prof. Marco Oliverio, Sapienza Università di Roma: studi su organismi invertebrati ematofagi.
2015 oggi: Prof. Stefano D Amelio, Sapienza Università di Roma: studi molecolari su nematodi anisakidi.
2000 2005: Dr. Gareth J. Lycett, Liverpool School of Tropical Medicine, LSTM, UK: studi su promotori salivari di zanzare.

PRINCIPALI INTERESSI SCIENTIFICI
Studi su insetti ematofagi vettori di parassiti, di arbovirus e di altri agenti patogeni per l uomo, ed in particolare, caratterizzazione molecolare dell interazione tra la zanzara vettrice ed il parassita malarico e tra la zanzara vettrice e l uomo.
Studi sulla biologia dei vettori con approcci genomici, trascrittomici e proteomici.
Studi sull immunità innata nel vettore malarico An. gambiae e nel vettore di arbovirus Ae. albopictus.
Studi sulle ghiandole salivari di An. gambiae e di altri artropodi ematofagi.
Studi sulle proprietà olfattive e sensoriali di zanzare vettrici.
Studi molecolari su Plasmodium falciparum, agente eziologico della malaria e su altri parassiti di interesse sanitario.

PUBBLICAZIONI

1. Bevivino, G.; Arcà, B.; Lombardo, F. (2021) Effects of Local and Systemic Immune Challenges on the Expression of Selected Salivary Genes in the Malaria Mosquito Anopheles coluzzii. Pathogens, 10, 1300. https://doi.org/10.3390/ pathogens10101300.

2. Cavallero S., Lombardo F. and D Amelio S. (2021) Novel omics studies on anisakid nematodes. Genes 2021, 12, 1250. https://doi.org/10.3390/genes 12081250.

3. D Amelio S., Lombardo F., Pizzarelli A., Bellini I. and Cavallero S. (2020) Advances in omic studies drive discoveries in the biology of anisakid nematodes. Genes, 2020, 11(7), pp. 1-18, 801.

4. Cavallero S., Lombardo F., Salvemini M., Cantacessi C. and D Amelio, S. (2020) Comparative transcriptomics reveals clues for differences in pathogenicity between hysterothylacium aduncum, anisakis simplex sensu stricto and anisakis pegreffii. Genes, 2020, 11(3), 321.

5. Buezo Montero S., Gabrieli P., Severini F., Picci L., Di Luca M., Forneris F., Facchinelli L., Ponzi M., Lombardo F. and Arcà B. (2019) Analysis in a murine model points to IgG responses against the 34k2 salivary proteins from Aedes albopictus and Aedes aegypti as novel promising candidate markers of host exposure to Aedes mosquitoes. PLoS Negl Trop Dis. 2019 Oct 16;13(10):e0007806. doi: 10.1371/journal.pntd.0007806.

6. Arcà B., Colantoni A., Fiorillo C., Severini F., Benes V., Di Luca M., Calogero R.A. and Lombardo F. (2019) MicroRNAs from saliva of anopheline mosquitoes mimic human endogenous miRNAs and may contribute to vector-host-pathogen interactions. Scientific Reports, Feb 27;9(1):2955. doi: 10.1038/s41598-019-39880-1.

7. Cavallero S., Lombardo F., Su X., Salvemini M., Cantacessi C., D'Amelio S. (2018) Tissue-specific transcriptomes of Anisakis simplex (sensu stricto) and Anisakis pegreffii reveal potential molecular mechanisms involved in pathogenicity. Parasites and Vectors. Jan 10;11(1):31. doi: 10.1186/s13071-017-2585-7.

8. Waterhouse R.M., IWAA Participants, Chen X., Bonizzoni M. and Gasperi G. (2017) The third International Workshop on Aedes albopictus: building scientific alliances in the fight against the globally invasive Asian tiger mosquito. Pathogens and Global Health, 111:4, 161-165, DOI: 10.1080/20477724.2017.1333560

9. Santolamazza F., Avellino P., Siciliano G., Yao F.A., Lombardo F., Ouédraogo J.B., Modiano D., Alano P., Mangano V.D. (2017) Detection of Plasmodium falciparum male and female gametocytes and determination of parasite sex ratio in human endemic populations by novel, cheap and robust RTqPCR assays. Malaria Journal, Nov 17;16(1):468. doi: 10.1186/s12936-017-2118-z.

10. Lombardo F., Salvemini M., Fiorillo C., Nolan T., Zwiebel L.J., Ribeiro J.M., Arcà B. (2017) Deciphering the olfactory repertoire of the tiger mosquito Aedes albopictus. BMC Genomics, Oct 11;18(1):770. doi: 10.1186/s12864-017-4144-1.

11. Pirone L., Ripoll-Rozada J., Leone M., Ronca R., Lombardo F., Fiorentino G., Andersen J.F., Pereira P.J.B., Arcà B., Pedone E. (2017) Functional analyses yield detailed insight into the mechanism of thrombin inhibition by the antihemostatic salivary protein cE5 from Anopheles gambiae. Journal of Biological Chemistry, Jul 28;292(30):12632-12642. doi: 10.1074/jbc.M117.788042.

12. Arcà B., Lombardo F., Struchiner C.J., Ribeiro J.M.C. (2017) Anopheline salivary protein genes and gene families: An evolutionary overview after the whole genome sequence of sixteen Anopheles species. BMC Genomics, 18 (1), 153. DOI: 10.1186/s12864-017-3579-8.

13. Lombardo F. and Christophides G.K. (2016) Regulators of Anopheles gambiae hemocyte immune response to Plasmodium berghei infection. Parasites and Vectors. Feb 9;9(78). doi: 10.1186/s13071-016-1359-y.

14. Dritsou V., Topalis P., Windbichler N., Simoni A., Hall A., Lawson D., Hinsley M., Hughes D., Napolioni V., Crucianelli F., Deligianni E., Gasperi G., Gomulski L.M., Savini G., Manni M., Scolari F., Malacrida A.R., Arcà B., Ribeiro J.M., Lombardo F., Saccone G., Salvemini M., Moretti R., Aprea G., Calvitti M., Picciolini M., Papathanos P.A., Spaccapelo R., Favia G., Crisanti A. and Louis C. (2015) A draft genome sequence of an invasive mosquito: an Italian Aedes albopictus. Pathogens and Global Health, Jul 109(5):207-20. doi: 10.1179/2047773215Y.0000000031.

15. Modica M.V., Lombardo F., Franchini P., Oliverio M. (2015) The venomous cocktail of the vampire snail Colubraria reticulata (Mollusca, Gastropoda). BMC Genomics, Jun 9;16:441. DOI: 10.1186/s12864-015-1648-4.

16. Marie A., Ronca R., Poinsignon A., Lombardo F., Drame P.M., Cornelie S., Besnard P., Le Mire J., Fiorentino G., Fortes F., Carnevale P., Remoue F., Arcà B. (2015) The Anopheles gambiae cE5 salivary protein: a sensitive biomarker to evaluate the efficacy of insecticide-treated nets in malaria vector control. Microbes and Infection, Jan 28. pii: S1286-4579(15)00015-5. DOI: 10.1016/j.micinf.2015.01.002.

17. Rizzo C., Lombardo F., Ronca R., Mangano V., Sirima S., Nèbiè I., Fiorentino G., Modiano D., Arcà B. (2014) Differential antibody response to the Anopheles gambiae gSG6 and cE5 salivary proteins in individuals naturally exposed to bites of malaria vectors. Parasites and Vectors, Nov 28;7(1):549.

18. Rizzo C., Ronca R., Lombardo F., Mangano V., Sirima S.B., Nèbiè I., Fiorentino G., Troye-Blomberg M., Modiano D., Arcà B. (2014) IgG1 and IgG4 antibody responses to the Anopheles gambiae salivary protein gSG6 in the sympatric ethnic groups Mossi and Fulani in a malaria hyperhendemic area of Burkina Faso. PLoS One, Apr 23;9(4):e96130. DOI: 10.1371/journal.pone.0096130.

19. Arcà B., Struchiner C.J., Pham V.M., Sferra G., Lombardo F., Pombi M., Ribeiro J.M. (2014) Positive selection drives accelerated evolution of mosquito salivary genes associated with blood-feeding. Insect Molecular Biology, Feb;23(1):122-31. doi: 10.1111/imb.12068.

20. Midega J., Blight J., Lombardo F., Povelones M., Kafatos F.C., Christophides G.K. (2013) Discovery and characterization of two Nimrod superfamily members in Anopheles gambiae. Pathogens and Global Health, Dec;107(8):463-74. DOI: 10.1179/204777213X13867543472674.

21. Lombardo F., Ghani Y., Kafatos F.C. and ChristophidesG.K. (2013) Comprehensive genetic dissection of the hemocyte immune response in the malaria mosquito Anopheles gambiae. PLoS Pathogens, 9 (1), e1003145, PMID: 23382679. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003145.

22. Ronca R.*, Kotsyfakis M.*, Lombardo F.,* Rizzo C., Currà C., Ponzi M., Fiorentino G., Ribeiro J.M. and Arcà B. (2012) The Anopheles gambiae cE5, a tight- and fast-binding thrombin inhibitor with post-transcriptionally regulated salivary-restricted expression. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 42 (9), 610-20, PMID: 22617725. DOI: 10.1016/j.ibmb.2012.04.008. *: equal contribution authorship.

23. Modiano D., Lombardo F. and Petrarca V. (2011) Parassitologia (Cap. 70). In: Principi di Microbiologia Medica, Seconda edizione, Antonelli G., Clementi M., Pozzi G., Rossolini G.M., Casa Editrice Ambrosiana, Milano. ISBN 978-8808-18073-5.

24. Rizzo C., Ronca R., Fiorentino G., Verra F., Mangano V., Poinsignon A., Sirima S.B., Nèbiè I., Lombardo F., Remoue F., Coluzzi M., Petrarca V., Modiano D. and Arcà B. (2011) Humoral Response to the Anopheles gambiae Salivary Protein gSG6: a Serological Indicator of Exposure to Afrotropical Malaria Vectors. Plos One, 6 (3), e17980. PMID: 21437289. DOI: 10.1371/journal.pone.0017980.

25. Salvemini M., Mauro U., Lombardo F., Milano A., Zazzaro V., Arcà B., Polito L.C. and Saccone G. (2011) Genomic organization and splicing evolution of the doublesex gene, a Drosophila regulator of sexual differentiation, in the dengue and yellow fever mosquito Aedes aegypti. BMC Evolutionary Biology, Feb 10; 11(1):41, PMID: 21310052. DOI: 10.1186/1471-2148-11-41.

26. Pinto S.B., Lombardo F., Koutsos A.C., Waterhouse R.M., McKay K., An C., Ramakrishnan C., Kafatos F.C. and Michel K. (2009) Discovery of Plasmodium modulators by genome-wide analysis of circulating hemocytes in Anopheles gambiae. Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 106 (50), 21270-21275, PMID: 19940242. DOI: 10.1073/pnas.0909463106.

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Roma, 10 aprile 2022

In fede,
Fabrizio Lombardo