ADVANCED MOLECULAR BIOLOGY TECNIQUES

Obiettivi formativi

Obiettivi generali Il corso di studi ha come obiettivo generale un overview dei principali meccanismi fisiopatologici relati al campo della immunologia con particolare riferimento alle tecniche avanzate di biologia molecolare integrata da strategie clinico-traslazionali in modelli cellulari. Obiettivi specifici 1. Conoscenza e comprensione dello studente Lo studente apprenderà i principi generali ed i meccanismi base della patologia e della fisiopatologia con particolare riferimento alla immunologia. Il taglio del modulo sarà poi indirizzato verso le tecniche avanzate di biologia molecolare anche con riferimento alla diagnostica e alla ricerca di base e soprattutto alla integrazione con i modelli cellulari avanzati. Nel modulo si includerà a sviluppare dimestichezza con la pubblicazione scientifica e la lettura critica di manoscritti su giornali di alto impatto. 2. Capacità di applicare conoscenza e comprensione Lo studente sarà in grado di apprendere le modalità con cui si sviluppano nuove tecniche sia di natura diagnostica che di ricerca di base, focalizzandosi sulla possibilità di sviluppare prodotti farmacologici con caratteristiche traslazionali-cliniche e alla luce delle nuove visioni della patologia. 3. Capacità critiche e di giudizio (prove lab, relaz scritte, etc) Le lezioni saranno impostate in modo dinamico, stimolando lo studente ad interagire con domande e risposte. In particolare, il modulo consta anche di una parte pratica-teorica che consentirà di verificare le conoscenze acquisite con discussioni critiche. Ruolo chiave la capacità di sapere leggere ed interpretare articoli scientifici. 4. Capacità di comunicare quanto si è appreso La valutazione dello studente sarà per più orale. Tuttavia, sarà possibile richiedere allo studente di preparare report scientifici di avanzamento sia come singolo che organizzati in gruppi di lavoro. Dove possibile, si utilizzerà lo strumento del workshop durante il corso. 5. Capacità di proseguire lo studio in modo autonomo Saranno forniti allo studente sia le diapositive delle lezioni, che protocolli scientifici nonché testi scientifici. L’utilizzo del supporto video sarà fornito. Durante il corso sarà possibile scaricare e fornire supporto di stampa di pubblicazioni scientifiche utili ai fini dello studio a casa.

Canale 1
ELENA DE FALCO Scheda docente

Programmi - Frequenza - Esami

Programma
Tecniche di discovery e profiling: • Introduzione alle tecniche omiche • Chimica del sequenziamento e della NGS • Genomica umana e sue applicazioni • Trascrittomica coding e non coding RNA • Biopsia liquida, DNA circolante • Instabilità dei microsatelliti • Farmacogenomica- Resistenza alla fluoropirimidine • Tecniche di analisi di proteine: proteomica e arrays • Biomarcatori circolanti • Single cell sequencing Tecniche di interference e editing: • Biologia dell’RNA non codificante e sue applicazioni biotecnologiche • Vettori di espressione genica • Tecnologie di genome editing Attività di laboratorio: • estrazione RNA e quantificazione • retro-trascrizione • preparazione di una realtime PCR e analisi dati • protocollo di antibody array e analisi dati • Diagnostica in oncologia molecolare: instabilità microsatellitare • Farmacogenomica-DPYD • Isolamento acidi nucleici per NGS • Next generation sequencing protocollo diagnostico
Prerequisiti
Indispensabile: Biologia cellulare e biologia molecolare Importante: Biochimica Utile: Chimica e Fisica
Testi di riferimento
Biologia molecolare - Zlatanova, van Holde - Anno 2018 Genetica e Genomica nelle scienze mediche. Strachan-Goodship-Chinnery Biotecnologie Molecolari Brown - seconda edizione 2017 Articoli scientifici e materiale fornito dal Professore
Frequenza
Frequenza facoltativa ma decisamente consigliata.
Modalità di esame
L'esame sarà composto da due parti: 1) un test a risposta multipla riguardante i 6 CFU di Patologia ed Immunologia 2) un test di idoneità riguardante le tecniche di laboratorio di biologia Molecolare e propedeutico alla prova orale 3) il voto finale sarà calcolato dalla media dei moduli 1) e 2) sopra descritti
Modalità di erogazione
Lezioni frontali: lezioni classiche con presentazione di diapositive da parte del docente. Queste saranno integrate da talk di specialisti nel settore, da audio-video di supporto per lo studente Seminari: se durante il corso saranno presenti importanti occasioni di seminari all’interno del circuito universitario, le lezioni saranno integrate Esperienze lab: conoscenza ed interazione con i laboratori di ricerca e con le principali tecniche diagnostiche Lavori di gruppo: possibili workshop di gruppo con discussioni dinamiche durante il corso
ISOTTA CHIMENTI Scheda docente

Programmi - Frequenza - Esami

Programma
Tecniche di discovery e profiling: • Introduzione alle tecniche omiche • Chimica del sequenziamento e del NGS • Genomica umana e sue applicazioni • Trascrittomica coding e non coding RNA • Metodi per lo studio di modifiche epigenetiche • Biopsia liquida, DNA circolante • Tecniche di analisi di proteine: proteomica e arrays • Biomarcatori circolanti • Single cell sequencing Tecniche di interference e editing: • Biologia dell’RNA non codificante e sue applicazioni biotecnologiche • Vettori di espressione genica • Tecnologie di genome editing Attivita' di laboratorio: • estrazione RNA e quantificazione • retro-trascrizione • preparazione di una realtime PCR e analisi dati • protocollo di antibody array e analisi dati
Prerequisiti
Conoscenze di biologia cellulare e molecolare, e di tecniche base di laboratorio biochimico e molecolare.
Testi di riferimento
Preeti Arivaradarajan and Gauri Misra (editors). "Omics approaches, technologies and applications". Springer.
Frequenza
Frequenza non obbligatoria, ma fortemente consigliata soprattutto per le attivita' di laboratorio.
Modalità di esame
L'esame finale si articolerà in due sezioni così composte: 1) una sezione a scelta multipla basata sui 6 CFU di Patologia e Immunologia 2) Una prova scritta preparatoria basata sui 6 CFU di Tecniche di Biologia Molecolare di Laboratorio, valevole come prova di abilitazione alla prova orale. Il voto finale sarà calcolato come media dei punteggi del Modulo 1 e del Modulo 2.
Bibliografia
Selected scientific articles and reviews.
Modalità di erogazione
Il modulo comprende sia lezioni frontali interattive, sia delle ore di attività pratica in laboratorio di ricerca/diagnostico, e di esercitazione di analisi ed elaborazione dati.
Francesca PAGANO Scheda docente

Programmi - Frequenza - Esami

Programma
Tecniche di discovery e profiling: • Introduzione alle tecniche omiche • Chimica del sequenziamento e del NGS • Genomica umana e sue applicazioni • Trascrittomica coding e non coding RNA • Metodi per lo studio di modifiche epigenetiche • Biopsia liquida, DNA circolante • Tecniche di analisi di proteine: proteomica e arrays • Biomarcatori circolanti • Single cell sequencing Tecniche di interference e editing: • Biologia dell’RNA non codificante e sue applicazioni biotecnologiche • Vettori di espressione genica • Tecnologie di genome editing Attivita' di laboratorio: • estrazione RNA e quantificazione • retro-trascrizione • preparazione di una realtime PCR e analisi dati • protocollo di antibody array e analisi dati
Prerequisiti
Indispensabile: Biologia cellulare e biologia molecolare Importante: Biochimica Utile: Chimica e Fisica
Testi di riferimento
Preeti Arivaradarajan and Gauri Misra (editors). "Omics approaches, technologies and applications". Springer.
Frequenza
Frequenza non obbligatoria, ma fortemente consigliata soprattutto per le attivita' di laboratorio.
Modalità di esame
L'esame finale si articolerà in due sezioni così composte: 1) una sezione a scelta multipla basata sui 6 CFU di Patologia e Immunologia 2) Una prova scritta preparatoria basata sui 6 CFU di Tecniche di Biologia Molecolare di Laboratorio, valevole come prova di abilitazione alla prova orale. Il voto finale sarà calcolato come media dei punteggi del Modulo 1 e del Modulo 2.
Bibliografia
Articoli e revisioni della letteratura selezionati
Modalità di erogazione
Il modulo comprende sia lezioni frontali interattive, sia delle ore di attività pratica in laboratorio di ricerca/diagnostico, e di esercitazione di analisi ed elaborazione dati.
  • Anno accademico2025/2026
  • CorsoMolecular Biology, Medicinal Chemistry and Computer Science for Pharmaceutical Applications - Biologia molecolare, Chimica farmaceutica e Informatica per applicazioni farmaceutiche
  • CurriculumCurriculum unico
  • Anno3º anno
  • Semestre1º semestre
  • SSDMED/46
  • CFU6